Ви є тут

Термогравіметричний аналіз гідрогелів агару у поєднанні з медом та кунжутним борошном для виробництва желейних батончиків

Важливим фактором стабільності та якості гелів під час виробництва, зберігання та використання у складі кондитерських і кулінарних виробів є їх термостійкість, яка залежить від інгредієнтного складу та вмісту сухих речовин. Статтю присвячено термогравіметричному аналізу гідрогелів на основі агару у поєднанні з медом та кунжутним борошном для виробництва желейних батончиків. Дослідження складалося з двох етапів. На першому вивчали дослідні зразки – окремі інгредієнти готового гідрогелю: агар 1200 ТМ "Fujian Province" (Китай), гліцерин харчовий TM BASF (Germany), мед соняшниковий та кунжутне борошно ТМ «Корисне борошно» (Україна). На другому етапі готували зразки агарових гідрогелів із необхідною кількістю допоміжних інгредієнтів: «агар 1 % - вода - гліцерин 0,2 %», «агар 1 % - вода - гліцерин 0,2 % - мед 25 %», «агар 1 % - вода - гліцерин 0,2 % - мед 25 % - кунжутне борошно 20 %». Порівняльний аналіз кривих показав, що на всіх стадіях розкладання експериментальних зразків відбуваються втрати маси внаслідок випаровування води. Досліджено, що кінцева втрата маси чистого агару від початку досліду становила 16,91 % (16,75 мг), зміна маси гліцерину – 0,17 % (0,21 мг), втрата маси меду соняшникового – 46,06 % (56,20 мг), а для кунжутного борошна зміна маси становила 7,25 % (8,92 мг). Дослідження довело, що в комплексних гелях відбувалося зменшення швидкості видалення води, що пов’язано з виникненням додаткових зв’язків між агаром та рецептурними компонентами – медом і кунжутним борошном. Встановлено, що в кінці експерименту маса дослідного зразка, зокрема «агар - вода - гліцерин», змінилася на 42 % (44,10 мг), втрата маси зразка «агар - вода - гліцерин - мед соняшниковий» становила 33,40 % (36,74 мг), маса зразка «агар - вода - гліцерин - мед соняшниковий - кунжутне борошно» поступово зменшувалась та в кінці експерименту змінилася на 28,82 % (34,59 мг) при нагріванні, що пов’язано з випаровуванням водної фази.

Ключові слова: термогравіметричний аналіз, дериватограми, агар, мед, гліцерин, кунжутне борошно, гідрогелі.

  1. Дорохович А. М., Мурзін А. В., Клепіков І. Л. Тиксотропія кондитерських агарових гелів. Хлебный и кондитерский бизнес. 2014. № 6 (19). С. 34–37. URL:http://dspace.nuft. edu.ua/jspui/ handle/123456789/20285.
  2. Соколовська І. О., Камбулова Ю. В., Оверчук Н. О. Дослідження ступеню зв’язування води в гелях пектину і альгінату натрію. Eastern-European Journal of Enterprise Technologies. 2016. Vol. 2(11). С. 1–11. DOI:10.15587/1729-4061.2016.65746.
  3. Шаніна О. М., Боровікова Н. О., Гавриш Т. В., Дугіна К. В., Фейзопуло О. Е. Вплив добавок білкової та полісахаридної природи на вологоутримуючу здатність безклейковинного тіста. Вісник Харківського національного технічного університету сільського господарства. 2019. 207. С. 132–141. URL:https://repo.btu.kharkov.ua//handle/ 123456789/4970.
  4. Дериватографічні дослідження компонентів розроблених молоковмісних термостабільних начинок з желатином та трансглютаміназою / О. Ю. Кошeль та ін. Науковий вісник ТДАТУ. 2020. Вип. 10. Т. 2. С. 232–238. URL:http://repo.snau.edu. ua:8080/xmlui/handle/ 123456789/9029.
  5. Thermal degradation of agar: mechanism and toxicity of products / Q. Q. Ouyang et al. Food Chemistry. 2018. Vol. 264. P. 277–283. DOI:10.1016/j. foodchem.2018.04.098.
  6. Shankar S., Reddy J. P., Rhim J. W. Effect of lignin on water vapor barrier, mechanical, and structural properties of agar/lignin composite films. International Journal of Biological Macromolecules. 2015. Vol. 81. P. 267–273. DOI:10.1016/j.ijbiomac.2015.08.015.
  7. Kasprzyk I., Depciuch J., Grabek-Lejko D., Parlinska-Wojtan M. FTIR-ATR Spectroscopy of Pollen and Honey as a Tool for Unifloral Honey Authentication. The Case Study of Rape Honey. Food Control. 2018. Vol. 84 P. 33–40. DOI:10.1016/j. foodcont.2017.07.015.
  8. Martínez-Sanz M., Gómez-Mascaraque L. G., Ballester A. R. Production of unpurified agar-based extracts from red seaweed Gelidium sesquipedale by means of simplified extraction protocols. Algal Research. 2019. Vol. 38. 101420 p. DOI:10.1016/j. algal.2019.101420.
  9. Thermal degradation kinetics of all-trans and cis-carotenoids in a light-induced model system / Y. D. Xiao et al. Food Chemistry. 2018. Vol. 239. P. 360–368. DOI:10.1016/j.foodchem. 2017.06.107.
  10. Pradhan G., Chandra Sharma Y. Studies on green synthesis of glycerol carbonate from waste cooking oil derived glycerol over an economically viable NiMgOx heterogeneous solid base catalyst. Journal of Cleaner Production. 2020. Vol. 264. 121258 p. DOI:10.1016/j.jclepro.2020. 121258.
  11. Neuroprotective Effects of Engineered Polymeric Nasal Microspheres Containing Hydroxypropyl-β-cyclodextrin on β-Amyloid (1- 42)–Induced Toxicity / A. Yalcin et al. Journal of Pharmaceutical Sciences. 2016. Vol. 105 (8). P. 2372– 2380. DOI:10.1016/j.xphs.2016.05.017.
  12. Differentiation of Anatolian Honey Samples from Different Botanical Origins by ATR-FTIR Spectroscopy Using Multivariate Analysis / S. Gok et al. Food Chemistry. 2015. Vol. 170. P. 234–240. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.08.040.
  13. Pauliuc D., Dranca F., Ropciuc S., Oroian M. Advanced Characterization of Monofloral Honeys from Romania. Food Agriculture. 2022. Vol. 12 (4). 526 p. DOI:10.3390/agriculture 12040526.
  14. Siddiqui A. J., Musharraf S. G., Choudhary M. I., Rahman A. Application of Analytical Methods in Authentication and Adulteration of Honey. Food Chem. 2017. Vol. 217. P. 687–698. DOI:10.1016/j. foodchem.2016.09.001.
  15. Singh I., Singh S. Honey Moisture Reduction and Its Quality. Journal of Food Science and Technology. 2018. Vol. 55. P. 3861–3871. DOI:10.1007/s13197-018-3341-5.
  16. Thermal degradation of honeys and evaluation of physicochemical properties / I. A. A. Silva et al. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 2013. Vol. 114. P. 353–358. DOI:10. 1007/s10973-012- 2926-x.
  17. Shankar S., Rhim J. W. Tocopherol-mediated synthesis of silver nanoparticles and preparation of antimicrobial PBAT/silver nanoparticles composite films. LWT - Food Science and Technology. 2016. Vol. 72. P. 149–156. DOI:10.1016/j.lwt.2016.04.054.
  18. Fathiraja P., Gopalrajan S., Karunanithi M. Process optimization and characterization of composite biopolymer films obtained from fish scale gelatin, agar and chitosan using response surface methodology. Polymer Bulletin. 2022. DOI:10.1007/s00289-022-04540-4.
  19. Vidal A., Sanchis V., Ramos A. J., Marin S. Thermal stability and kinetics of degradation of deoxynivalenol, deoxynivalenol conjugates and ochratoxin A during baking of wheat bakery products. Food Chemistry. 2015. Vol. 178. P. 276–286. DOI:10.1016/j.foodchem.2015.01.098.
  20. Shankar S., Teng X., Rhim J. W. Properties and characterization of agar/CuNP bionanocomposite films prepared with different copper salts and reducing agents. Carbohydrate Polymers. 2014. Vol. 114. P. 484– 492. DOI:10.1016/j.carbpol.2014.08.036.
  21. Ghosh M., Upadhyay R., Mahato D. K., Mishra H. N. Thermal and oxidative stability assessment of synergistic blends of sunflower and sesame oils tailored for nutritionally stable composition of omega fatty acids. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 2019. Vol. 135. P. 2389–2398. DOI:10.1007/s10973- 018-7342-4.
  22. Bhatnagar A. S., Hemavathy J., Krishna A. G. Development of a rapid method for determination of lignans content in sesame oil. Journal of Food Science and Technology. 2015. Vol. 52. P. 521–527. DOI:10.1007/s13197-013-1012-0.
ДолученняРозмір
PDF icon bokovets_1_2023.pdf2.56 МБ