Ви є тут

Розторопша плямиста (Silybum marianum) у раціоні риби: застосування силімарину для підвищення продуктивності та стійкості кларієвого сома (Clarias gariepinus)

Проведено комплексну науково обґрунтовану оцінку ефективності введення насіння розторопші до складу повнораціонного продукційного комбікорму Fishery Tech Barbel Pro Plus Float 42/12 для годівлі африканського кларієвого сома (Clarias gariepinus), вирощуваного в умовах рециркуляційної аквакультурної системи. Експеримент загальною тривалістю 56 діб проведено в жовтні-грудні 2025 р. в басейнах рециркуляційної аквасистеми рибного господарства «Сом з Павлиша». Дослідження складалося з двох етапів. Інтенсивність росту кларієвого сома оцінювали за показниками індивідуального абсолютного, середньодобового та відносного приросту маси тіла. Коефіцієнт конверсії кормів у контрольному варіанті визначали шляхом перерахунку маси личинок у масу комбікорму із застосуванням коефіцієнта 1,645, розрахованого як різниця між обмінною енергією комбікорму (13,830 Мдж/кг) та живих личинок Hermetia illucens (8,409 Мдж/кг). Для проведення іхтіопатологічного аналізу за результатами другого етапу експерименту відібрано по 8 екземплярів риби з дослідного та контрольного варіантів. Установлено, що протягом обох етапів дослідження температури води поступово знижувалася і була нижчою за оптимальні значення (27–30 °С). Зокрема, під час першого (вирівнювального) етапу її зниження становило 1–3 °С (середньодобове значення – 24,9 °С), тоді як упродовж другого (дослідного) етапу воно було більш вираженим, і середньодобова температура води становила 22,4 °С. Риба дослідного варіанта характеризувалася високим рівнем виживаності (99,03%), однак за показниками інтенсивності росту переважали особини контрольного варіанта: за абсолютним приростом – на 11,24 %, за відносним – на 9,26 %. Водночас різниця між середніми значеннями кінцевої маси риби в обох варіантах була статистично значущою (р< 0,05). Ефективність конверсії корму в дослідному варіанті перевищувала відповідний показник контрольного на 6,32 %. Найнижчі темпи росту кларієвого сома зафіксовано в останній тиждень другого етапу, що корелювало зі зниженням середньої температури води до 22,0 °С. За результатами іхтіопатологічних досліджень установлено суттєве зниження ураження шлунка та кишківника (гостре та хронічне запалення, наявність крововиливів): із 75 % до початку експерименту до 12,5 % після його завершення. Аналогічну позитивну динаміку відзначено щодо стану жовчного міхура: після завершення досліду запальні процеси не виявлялися, тоді як до його початку вони реєструвалися у 25 % особин. Моніторинг морфологічного стану печінки після завершення експерименту показав, що орган характеризується пружною консистенцією, щільною структурою, блискучою капсулою та відсутністю ексудативних включень. Водночас у 25 % досліджуваних гіробіонтів виявлено незначну мармуровість тканини та поодинокі крововиливи під капсулою у каудальній частині органу. З урахуванням виявлених патологоанатомічних змін установлено суттєве покращення стану всіх внутрішніх органів, що проявлялося у відповідній морфологічній нормі у 75 % після завершення експерименту.

Ключові слова: фітодобавка, насіння розторопші плямистої (Silybum marianum), продукційний комбікорм, коефіцієнт конверсії корму, рециркуляційна аквакультурна система, африканський кларієвий сом (Clarias gariepinus), личинки чорної левинки (Hermetia illucens).

  1. Wahsha M., Al-Zibdah M. The role of natural antidotes as an alternative to chemotherapy in fish aquaculture. Fresenius Environmental Bulletin. 2020. Vol. 29. No 11. P. 9667–9674.
  2. Abd-elaziz R.A., Shukry M., Abdel-Latif H.M.R., Saleh R.M. Growth-promoting and immunostimulatory effects of phytobiotics as dietary supplements for Pangasianodon hypophthalmus finger lings. Fish and Shellfish Immunology. 2023. Vol. 133. DOI:10.1016/j.fsi.2023.108531
  3. Silybum marianum promotes growth, hepatic antioxidative activity, and splenic immunity but does not influence the intestinal barrier function of Nile tilapia, Oreochromis niloticus / M.R. Chaklader et al. Aquaculture. 2024. Vol. 583. DOI:10.1016/j.aquaculture.2024.740554
  4. Дерень О.В. Біологічна цінність та використання ехінацеї пурпурової (Echinacea purpurea) в тваринництві. Рибогосподарська наука України. 2009. № 1(7). С. 127–133.
  5. Дерень О.В., Пірус Р.І., Качай Г.В. Вплив ехінацеї пурпурової (Echinacea purpurea) на продуктивні характеристики та якість м’яса коропа (Cyprinus carpio). Рибогосподарська наука України. 2012. № 3 (21). С. 47–50.
  6. Дерень О.В., Рівіс Й.Ф. Підвищення рівня вищих жирних кислот в організмі коропів (Cyprinus carpio) під впливом настойки ехінацеї пурпурової (Echinacea purpurea). Рибогосподарська наука України. 2009. № 2 (8). С. 100–105.
  7. Паламарчук Р.А., Дерень О.В., Качай Г.В. Вплив згодовування амаранту (Amaranthus) на деякі фізіолого-біохімічні показники організму дволіток коропа. Рибогосподарська наука України. 2016. № 2 (36). С. 73–81. DOI:10.15407/fsu2016.02.073
  8. Dietary supplementation of micelle silymarin enhances the antioxidant status, innate immunity, growth performance, resistance against Vibrio parahaemolyticus infection, and gut morphology in Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) / M. Hasanthi et al. Animal Feed Science and Technology. 2024. Vol. 311. DOI:10.1016/j.anifeedsci.2024.115953
  9. Protective properties of milk thistle in aquaculture: a study on its role in mitigating supracide-induced stress in fish / R. Al-Jawasreh et al. Jordan Journal of Biological Sciences. 2024. Vol. 17. No 3. Р. 443–452. DOI:10.54319/jjbs/170306
  10. Кориляк М.З. Фітотерапевтичні властивості розторопші плямистої (Silybum marianum) та її використання в годівлі тварин. Рибогосподарська наука України. 2013. № 4 (26). С. 97–108. DOI:10.15407/fsu2013.04.097
  11. Tedesco D.E.A., Guerrini A. Use of milk thistle in farm and companion animals: a review. Planta Medica. 2023. No 89. P. 584–607. DOI:10.1055/a-1969-2440
  12. Носенко Ю. Розторопша плямиста – «подарунок Діви Марії». Пропозиція. 2009. № 11 (16). С. 30–32.
  13. Кориляк М.З., Грициняк І.І., Дерень О.В., Добрянська О.П. Перебіг окисних процесів в гепатопанкреасі дволіток коропа за введення до складу кормів насіння розторопші плямистої (Silybum marianum). Рибогосподарська наука України. 2017. № 1 (39). С. 73–83. DOI:10.15407/fsu2017.01.073
  14. Кориляк М.З., Віщур О.І., Грициняк І.І. Вплив розторопші плямистої (Silybum marianum) на стан Т- і В-клітинного імунітету та природну резистентність дволіток коропа. Рибогосподарська наука України. 2019. № 3 (49). С. 89–100. DOI:10.15407/fsu2019.03.089
  15. Кориляк М.З., Бернакевич О.М., Добрянська О.П., Бобеляк Л.Й. Активність системи антиоксидантного захисту в організмі молоді коропа за згодовування олії розторопші плямистої. Рибогосподарська наука України. 2023. № 4 (66). С. 100–113. DOI:10.61976/fsu2023.04.100
  16. Silymarin, Silybum marianum, supplemented weaning diet boosted survival, growth, antioxidant status, and fatty acids profi le of seabass, Dicentrarchus labrax / S.A. Shahin et al. Annals of Animal Science. 2023. Vol. 23. No 1. Р. 253–264. DOI:10.2478/aoas-2022-0068
  17. Dietary silymarin, Silybum marianum extract ameliorates cadmium chloride toxicity in common carp, Cyprinus carpio / S.G. Al-Shawi et al. Annals of Animal Science. 2022. Vol. 22. No 2. P. 741–750. DOI:10.2478/aoas-2021-0065
  18. Jindal R., Sinha R., Brar P. Evaluating the protective efficacy of Silybum marianum against deltamethrin induced hepatotoxicity in piscine model. Environmental Toxicology and Pharmacology. 2019. Vol. 66. P. 62–68. DOI:10.1016/j.etap.2018.12.014
  19. Improving silymarin oral bioavailability using silica-installed redox nanoparticle to suppress inflammatory bowel disease / T-H.T. Nguyen et al. Journal of Controlled Release. 2021. Vol. 331. P. 515–524. DOI:10.1016/j.jconrel.2020.10.042
  20. Kim H.S., Jo S., Yun K.S., Lee K-J. Effects of dietary micelle silymarin on the growth performance, feed utilization and health of olive flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture International. 2023. Vol. 31. P. 3419–3436. DOI:10.1007/s10499 023-01135-2
  21. The protective effect of silymarin on the carbon tetrachloride (CCl4)-induced liver injury in common carp (Cyprinus carpio) / R. Jia et al. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Animal. 2013. Vol. 49. P. 155–161. DOI:10.1007/s11626-013-9587-3
  22. Effects of silymarin on growth performance, antioxidant capacity and immune response in turbot (Scophthalmus maximus L.) / J. Wang et al. Journal of the World Aquaculture Society. 2019. Vol. 50. No 6. Р. 1168–1181. DOI:10.1111/jwas.12614
  23. Evaluation of the immunomodulatory effects of silymarin extract (Silybum marianum) on some immune parameters of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Actinopterygii: Salmoniformes: Salmonidae) / K. Ahmadi et al. Acta Ichthyologica et Piscatoria. 2012. Vol. 42. No 2. Р. 113–120. DOI:10.3750/AIP2011.42.2.04
  24. Silymarin liposomes improves oral bioavailability of silybin besides targeting hepatocytes, and immune cells / N. Kumar et al. Pharmacological Reports. 2014. Vol. 66. Р. 788–798. DOI:10.1016/j.pharep.2014.04.007
  25. Кориляк М.З. Продуктивність та фізіолого-біохімічні показники організму коропа за введення до складу корму розторопші плямистої. Науковий вісник ЛНУВМБ імені С. З. Ґжицького. Сільськогосподарські науки. 2020. Т. 22. № 92. С. 113–118. DOI:10.32718/nvlvet-a9219
  26. Кориляк М.З. Результати вирощування товарного коропа (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) при використанні в складі раціону розторопші плямистої (Silybum marianum (L.) Gaertn). Рибогосподарська наука України. 2019. № 4 (50). С. 109–122. DOI:10.15407/fsu2019.04.109
  27. Silymarin: unveiling its pharmacological spectrum and therapeutic potential in liver diseases-A comprehensive narrative review / H.M. Jaffar et al. Food Science & Nutrition. 2024. Vol. 12. No 5. Р. 3097–3111. DOI:10.1002/fsn3.4010
ДолученняРозмір
PDF icon kovalenko_1_2026_.pdf722.79 КБ