Ви є тут
Вплив рівня протеїнового живлення та амінокислотного складу раціону на розвиток воскових залоз медоносних бджіл Apis mellifera L.
Медоносні бджоли формують стільники виключно з воску, синтезованого восковими залозами робочих особин. Інтенсивність секреторної активності клітин воскових залоз слід розглядати у тісному взаємозв’язку з розвитком структурних елементів жирового тіла, представлених трофоцитами та еноцитами. Відомо, що процеси восковиділення значною мірою залежать від функціонального стану жирового тіла. Основним чинником, який забезпечує ліпогенез у жировому тілі бджіл, є споживання квіткового пилку – головного джерела амінокислот і ліпідів. Дефіцит протеїну пригнічує функціональну активність воскових залоз, тоді як збалансоване амінокислотне живлення підвищує секреторну активність і потенціал бджіл до будівництва стільників. У статті наведено результати досліджень впливу протеїнового живлення та окремих амінокислот у складі раціону на інтенсивність восковиділення у медоносних бджіл Apis mellifera L. Метою роботи було оцінити вплив білкового та амінокислотного живлення на морфометричні показники клітин жирового тіла і воскових залоз бджіл. Дослідження проводили у 2023–2025 рр. на трьох групах бджолиних сімей по 5 у кожній, сформованих за методом аналогів. Бджоли контрольної групи не отримували протеїнових кормів. Бджолам І дослідної групи згодовували канді, виготовлене із суміші цукрового сиропу, меду, соєвого борошна, сухого яєчного меланжу та квіткового пилку. Бджолині сім’ї ІІ дослідної групи споживали аналогічний корм, до складу якого додатково вводили амінокислотний комплекс. До його складу входили синтетичні амінокислоти: аргінін – 50,0 мг, лізин – 45,0 мг метіонін – 15 мг, лейцин – 75,0 мг та ізолейцин – 45,0 мг на 1 кг протеїнової пасти. Морфологічний аналіз жирового тіла та воскових залоз виконували на поперечних зрізах IV сегмента черевця завтовшки 7 мкм, виготовлених після фіксації у фіксаторі Буена та фарбування метиленовим синім. Порівняно з контролем, у бджіл І дослідної групи довжина трофоцитів збільшилися на 17,2 %, а ширина – на 15,1 %. Згодовування амінокислотного комплексу бджолам ІІ дослідної групи зумовило ще інтенсивніший ріст клітин: лінійні розміри трофоцитів зросли на 23,1 % у довжину та на 28,6 % у ширину (p<0,001). Використання протеїнових кормів не мало вираженого впливу на морфометричні показники еноцитів. Порівняно ><0,001). Використання протеїнових кормів не мало вираженого впливу на морфометричні показники еноцитів. Порівняно з контролем, довжина цих клітин у бджіл дослідних груп збільшилася на 7,8–8,9 %. Клітини восковидільного епітелію характеризувалися збільшенням довжини: на 15,9 % у І дослідній групі та на 21,7 % у ІІ групі (p<0,001). Отже, використання білкових раціонів сприяє помірній гіпертрофії еноцитів і вираженому збільшенню розмірів трофоцитів, тоді як додавання амінокислотного комплексу додатково стимулює розвиток восковидільного епітелію, що узгоджується з підвищенням потенціалу до воскотворення.
Ключові слова: медоносні бджоли, жирове тіло, восковидільна залоза, рівень годівлі, протеїнове живлення, структура раціону, поживні речовини, амінокислоти, інтенсивність восковиділення.
- Béjar, V., Garduño, J., Calvillo, K., García, E. (2022). Survival, Body Condition, and Immune System of Apis mellifera liguistica Fed Avocado, Maize, and Polyfloral Pollen Diet. Neotrop Entomol. 51 (4), pp. 583–592. DOI:10.1007/s13744-022-00974-7.
- Carroll, M., Brown, N., Goodall, C., Downs, A., Sheenan, T. (2021). Correction: Honey bees preferentially consume freshly-stored pollen. PLOS ONE, 16 (3). DOI:10.1371/journal.pone.0249458.
- Casanelles-Abella, J., Moretti, M. (2022). Challenging the sustainability of urban beekeeping using evidence from Swiss cities. NPJ Urban Sustainability, 2 (3). DOI:10.1038/s42949-021-00046-6.
- Cassier P., Lensky, Y. (1995). Ultrastructure of the wax gland complex and secretion of beeswax in the worker honey bee Apis mellifera L. Apidologie, 26 (1), pp. 17–26. DOI:10.1051/ apido:19950103.
- Chang, H., Ding, G., Jia, G., Feng, M., Huang, J. (2022). Hemolymph Metabolism Analysis of Honey Bee (Apis mellifera L.) Response to Different Bee Pollens. Insects, 14 (1), 37 p. DOI:10.3390/insects14010037.
- Dalal, M., Aljedani, N. (2018). Comparing the Histological Structure of the Fat Body and Malpighian Tubules in Diff erent Phases of Honeybees, Apis mellifera jemenatica (Hymenoptera: Apidae). Journal of Entomology, 15, pp. 114–124. DOI:10.3923/je.2018.114.124.
- Fedak, V.V. (2023). Influence of feed quality on wax gland development indicators in honey bees (Apis mellifera L.). Beekeeping of Ukraine, 1 (9). DOI:10.46913/beekeepingjournal.2022.9.15
- Haase, A., Hoff mann, K. (2021). Pollen Diet-Properties and Impact on a Bee Colony. Insects, 12 (9), 798 p. DOI:10.3390/insects12090798.
- Herman, N., Vitenberg, T., Opatovsky, I. (2025). Metabolic and immune functions of the hemolymph and fat body in Hermetia illucens under pathogen challenge. Journal of Insect Science, 25 (5). DOI:10.1093/jisesa/ieaf074.
- Huang, K., Liu, Y., Perrimon, N. (2022). Roles of Insect Oenocytes in Physiology and Their Relevance to Human Metabolic Diseases. Frontiers in Insect Science, 2. DOI:10.3389/fi nsc.2022.859847.
- Kovalʹsʹkyy, Y., Zhmur, V. (2024). Peculiarities of the development of the fat body in the body of honey bees. Scientifi c Bulletin of the S.Z. Gzhytsky National University of Biomedical Sciences, 26 (100), pp. 179–183. DOI:10.32718/nvlvet-a10028. (In Ukrainian).
- Liolios, V., Tananaki, C ., Kanelis D. (2022). The microbiological quality of fresh bee pollen during the harvesting process. Journal of Apicultural Research, 31 (3), pp. 387–409. DOI:10.1051/apido:2000130.
- Molder, L., Pereda, J., Sonnenberg, A. (2021). Regulation of hemidesmosome dynamics and cell signaling by integrin α6β4. Journal of Cell Science, 134 (18). DOI:10.1242/jcs.259004/
- Montserrat-Canals, M., Schnelle, K., Leipart, V. (2025). Cryo-EM structure of native honey bee vitellogenin. Nat Commun, 16, 5736 p. DOI:10.1038/s41467-025-58575-y.
- Ponti, D. (2025). The Nucleolus: A Central Hub for Ribosome Biogenesis and Cellular Regulatory Signals. International Journal of Molecular Sciences, 26 (9), 4174 p.
- Sanford, M., Dietz, A. (1976). The fine structure of the wax gland of the honey bee (Apis mellifera L.). Apidologie, 7 (3), pp. 197–207. Available at:https://hal.science/ file/index/docid/890403/filename/hal-00890403.pdf
- Shcherbatyy, Z., Kos, V., Kropyvka Y. (2014). Genetics with biometrics. Laboratory and practical course. Lviv, 288 p. (In Ukrainian).
- Sirotkin, A., Tarko, A., Alexa, R., Fakova, A., Alwasel, S., Harrath, A. (2020). Bee pollens originating from different species have unique efects on ovarian cell functions. Pharm Biol., 58 (1), pp. 1101–1106. DOI:10.1080/13880209.2020.1839514.
- Strachecka, A., Olszewski, K., Kuszewska, K. (2021). Segmentation of the subcuticular fat body in Apis mellifera females with different reproductive potentials. Scientific reports, 11. DOI:10.1038/s41598-021-93357-8.
- Svečnjak, L., Chesson, L.A., Gallina, A., Maia, M., Martinello, M., Mutinelli, F., Muz, M.N., Nunes, F.M., Saucy, F., Tipple, B.J., Wallner, K., Waś, E., Waters, T.A. (2019). Standard methods for Apis mellifera beeswax research. J. Apic. Res., 58, pp. 1–108. DOI:10.1080/002188 39.2019.1571556.
- Toprak, U., Hegedus, D., Doğan, C., Güney, G. (2020). A journey into the world of insect lipid metabolism. Archives of Insect Biochemistry and Physiology, 104 (2). DOI:10.1002/arch.21682.
- Xu, R., Ma, B., Yang, Y., Li, J., Xu, X., Fang, Y. (2024). Proteome–metabolome profiling of wax gland complex reveals functional changes in honeybee, Apis mellifera L. Science, 27 (3). DOI:10.1016/j.isci.2024.109279.
| Долучення | Розмір |
|---|---|
| 835.27 КБ |
https://orcid.org/0000-0002-5751-5844