Ви є тут

ВПЛИВ ФІЗИЧНИХ ПОКАЗНИКІВ ВОДИ НА КІЛЬКІСТЬ МІКРОЯДЕР У КЛІТИНАХ ЕМБРІОНІВ ХИЖИХ ВИДІВ РИБ

Розвиток і життєдіяльність організму тісно пов᾽язані з умовами середовища. Зв᾽язок організму з навколишнім середовищем відбувається через взаємодію з групами біотичних та абіотичних чинників. Співвідношення організму з окремими елементами його абіотичного і біотичного середовища не існує ізольовано, вони знаходяться в єдиній системі зв’язків. Вага абіотичних чинників навколишнього середовища в житті риб значна, особливо у фазах ембріонального періоду онтогенезу. Під час моніторингу цитологічних показників ембріонів та личинок риб за змін умов середовища встановлено, що пристосування організму до температурних умов середовища відбувається на клітинному рівні. Порогові температури є межею опору клітин організму екстремальним температурам зовнішнього середовища. З огляду на те, що ця здатність у різних видів різна, температурні пороги їх неоднакові. Доведено, що для кожного виду риб існує певна амплітуда температури, в межах якої можливий їх ембріональний розвиток. Від температури залежить швидкість перебігу ембріогенезу. Відхилення від оптимальної величини температури та її наближення до порогової спричиняє порушення в ембріогенезі риб, загибель зародків або появу аномалій їх розвитку. За дії порогової температури на запліднену ікру також можлива поява поліплоїдності клітин. Генетичні зміни в соматичних клітинах є інтегральним показником порушення гомеостазу. Вони характеризують наявність мутагенів середовища та ефективність реакції імунної відповіді організму. У нормі більшість генетичних порушень елімінуються. Наявність таких порушень є індикатором стресу, який зумовлює появу аномальних клітин та зниження імунного статусу організму. Такі порушення можуть бути виявлені на хромосомному рівні. Доведено, що критичні періоди в ембріональному розвитку риб виявляються на стадіях дроблення клітин на морулі, гаструляції та в ембріонів під час органогенезу. Однак наявність чутливих періодів не завжди пов’язана з процесами диференціації, наприклад, початком дроблення клітин, періодом виходу ембріонів з оболонок.

Ключові слова: хижі види риб, температурний режим, метаболізм, мікроядерний тест, ембріональна клітина, ядерця, стрес-чинники, абіотичний вплив.

  1. Журавлёва Н.Г. Влияние абиотических и биотических факторов среды на выживаемость эмбрионов и молоди рыб. Вестник МГТУ. 2009. T. 12. № 2. С. 338–343.
  2. Вовк П.С. Реакции эмбрионов и личинок белого амура на температурные воздействия. Разнокачественность раннего онтогенеза у рыб. Киев, 1974. С. 191–226.
  3. Константинов А.С. Влияние колебаний температуры на рост, энергетику и физиологическое состояние молоди рыб. Известия РАН. Сер. биологическая. 1993. № 1. С. 55–63.
  4. Лукиянов С.В. Влияние колебаний абиотических факторов (pH, соленость, температура) на рыб в эмбрионально-личиночный период развития. Саранск, 2010. 145 с.
  5. Белоусов Л.В. Основы общей эмбриологии. М.: Изд-во МГУ. 2005. 360 с.
  6. Schaefer J., Ryan A. Developmental plasticity in the thermal tolerance of zebrafi sh Danio rerio. Journal of Fish Biology. 2006. Vol. 69. № 3. P. 722–734.
  7. Bestgen K.R., Williams M.A. Eff ects of fl uctuating and constant temperatures on early development and survival of Colorado squawfi sh. Trans. Amer. Fish. Soc. 1994. Vol. 123. № 4. P. 574–579.
  8. Urho L. Habitat shifts of perch larvae as survival strategy. Ann. Zool. Fennici. 1996. Vol. 33. P. 329–340.
  9. Watanabe Y. Eff ect of diel temperature alterations on specifi c growth of red sea bream. Oceanis. 1992. Vol. 18. № 1. P. 133–140.
  10. Капшай Д.С. Оценка оптимальных и сублетальных температур у молоди различных видов рыб. Современные проблемы и перспективы рыбохозяйственного комплекса. Мат. второй научно-практич. конф. молодых ученых. М.: Изд. ВНИРО, 2011. С. 274–280
  11. Andrades J.A., Becerra J., Fernández-Llebrez P. Skeletal deformities in larval, juvenile and adult stages of  cultured gilthead sea bream (Sparus aurata L.). Aquaculture. 1996. Vol. 141. P.1–11.
  12. Романенко В.Д. Основы гидробиологии. К.: Генеза. 2004. 664 с.
  13. Janauer G.A. Aquatic Vegetation in River Flood plains: Climate Change Eff ects, River Restoration and Eco-hydrology Aspects. Climate Change. Inferences from Paleoclimate and Regional Aspects. New York: Springir. 2012. P. 149–156.
  14. Hochachka P.W., Somero G.N. Biochemical Adaptation: Mechanism and Process in Physiological Evolution. Oxford: Oxford University Press. 2002. 356 p.
  15. Немова Н.Н., Высоцкая Р.У. Биохимическая индикация состояния рыб. М.: Наука. 2004. 215 с.
  16. Carter K. Eff ects of Temperature, Dissolved Oxygen/ Total Dissolved Gas, Ammonia, and pH on Salmonids. Implications for California’s North Coast TMDLs. 2008. July. 53 p.
  17. Вербицкий В.Б. Понятие экологического оптимума и его определение у пресноводных пойкилотермных животных. Журнал общей биологии. 2008. Т. 69. № 1. С. 44–56.
  18. Детлаф Т.А. Температурно-временные закономерности развития пойкилотермных животных. М.: Наука. 2001. 211 с.
  19. Diana J.S. The growth of largemouth bass, Micropterus salmoides, under constant and fl uctuating temperatures. J. Fish Biol. 1984. Vol. 24. № 2. P. 165–172.
  20. Barton B.A. Stress in fi shes: a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids. Integrative and comparative biology. 2002. Vol. 42. P. 517–525.
  21. Євтушенко М.Ю., Шевченко П.Г., Хижняк М.І. Наукові-методичні рекомендації щодо вибору індикаторних організмів в системі біомоніторингу. Київ: Український фітосоціальний центр. 2011. 24 с.
  22. Schneider J.C., Copeland J., Wolgamood M. Tolerance of incubating walleye eggs to temperature fl uctuation. Aquacult. 2002. Vol. 64. № 1. P. 75–76.
  23. Bermudes M., Ritar A.J. Eff ects of temperature on the embryonic development of thestriped trumpeter (Latris lineata Bloch and Schneider, 1801). Aquaculture. 1999. Vol. 176. P. 245–255.
  24. First studies of embryonic and larval development of Coilia nasus (Engraulidae) under controlled conditions / G.C. Xu et al. Aquaculture Research. 2011. 42(2). P. 593– 601. Doi:https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02655.x.
  25. Eff ect of photoperiod on growth and gonadal development of juvenile Topmouth Gudgeon Pseudorasbora parva / DM. Zhu et al. Environmental Biology of Fishes. 2014. 97(2). P. 147–156. Doi:https://doi.org/10.1007/s10641-013- 0133-7.
  26. Del Rio A.M,, Davis B.E., Fangue N.A., Todgham A.E. Combined effects of warming and hypoxia on early life stage Chinook salmon physiology and development. Conserv Physiol. 2019. 7(1). Doi: https://doi.org/10.1093/conphys/ coy078.
  27. Ontogeny infl uences sensitivity to climate change stressors in an endangered fi sh / L.M. Komoroske et al. Conserv Physiol. 2014. 2. Doi:https://doi.org/10.1093/conphys/ cou008.
  28. McDonnell L.H., Chapman L.J. At the edge of the thermal window: eff ects of elevated temperature on the resting metabolism, hypoxia tolerance and upper critical thermal limit of a widespread African cichlid. Conserv Physiol. 2015. 3 p. Doi:https://doi.org/10.1093/conphys/cov050.
  29. Eff ect of diff erent water temperatures on sex ratio, gonad development and production parameters of common carp (Cyprinus carpio L.). / L. Kovács et al. Aquaculture Research. 51(2) 2020. P. 858–862. Doi:https://doi.org/10.1111/ are.14407.
  30. Fantastically plastic: fi sh larvae equipped for a new world / K. Pittman et al. Reviews Aquaculture. 2013. 5. P. 224–267. Doi: https://doi.org/10.1111/raq.12034.
  31. Водяніцький О.М., Потрохов О.С., Зіньковський О.Г. Вплив коливань температурного режиму водойми на ембріональний розвиток білого товстолобика. Рибогосподарська наука України. 2015. № 1. С. 96–107. Doi:https:// doi.org/10.15407/fsu2015.01.096.
  32. Гриневич Н.Є., Кухтин М.Д., Семанюк Н.В., Присяжнюк Н.М. Типи мікроядер у клітинах зябер малька райдужної форелі під час формування мікробіоценозу біофільтра УЗВ. Науковий вісник Національного університету біоресурсів і природокористування України. 2018. Вип. 293. С. 41–46
  33. Bondarev D. L., Kunah O. M., Fedushko M. P., Gubanova N. L. The impact of temporal patterns of temperature and precipitation on silver Prussian carp (Carassius gibelio) spawning events. Biosystems Diversity. 2019. 27(2). P. 106‒117. Doi:https://doi.org/10.15421/011915
  34. Bondarev D., Kunah O., Zhukov O. Assessment of the impact of seasonal patterns climatic conditions on spawning events of the white bream Blicca bjoerkna (Linnaeus, 1758) in astronomical and biological time. Acta Biologica Sibirica. 2018. 4(2). P. 48–64. Doi:https://doi.org/10.14258/ abs.v4i2.4125
  35. Richards J.G., Farrell A.P., Brauner C.J. Metabolic and Molecular Responses of Fish to Hypoxia. Fish Physiology. Hypoxia. San Diego. 2009. Vol. 27. P. 443–485.
  36. Anderson N. The Eff ect sofhypoxia and temperature on developing embryos of the annual killifi sh Austrofundulus limnaeus. Portland State University PDXScholar Dissertations and Theses Dissertations and Theses Fall. 2012. 52 p.
  37. Ильинских Н.Н., Ильинских И.Н., Некрасов В.Н. Использование микроядерного теста в скрининге и мониторинге мутагенов. Цитология и генетика. 1988. Т. 22. № 7. С. 67–72.
  38. Ильинских Н.Н. Физиологические факторы мутагенеза в связи с изменением иммунореактивности организма. III школа-семинар по генетике и селекции животных. II научные чтения памяти академика Д.К. Беляева. Новосибирск, 1989. 47 с.
  39. Архипчук В.В., Жукинский В.Н. Изменение количественных характеристик ядрышек в эмбриогенезе некоторых карповых рыб и в связи с разнокачественностью икры. Рыбное хозяйство. К. 1987. № 43. С. 18–24.
  40. Howel W.M., Black D.A. Controlled silver-staining of nucleolus organizer regions with a protective colloidal developer: a 1-step method. Experientia. 1980. Vol. 36. P. 1014–1015.
  41. Физиолого-биохимические и генетические исследования ихтиофауны Азово-черноморского бассейна. Методическое руководство / Г.Г. Корниенко и др. Ростов-на-Дону: Эверест, 2005. 105 с.
ДолученняРозмір
PDF icon hrynevychkhomiak_1_2020.pdf2.39 МБ